靳昔蒙, 姜鹏, 王东强, 翟宗振, 尹继刚, 朱冠
目的 本研究旨在阐明微小隐孢子虫亲环蛋白CpCyP1(Cryptosporidium parvum cyclophilin protein-1)的亚细胞定位和酶动力学等特征,为进一步深入研究其生物学功能和探索抗虫药物靶点提供基础。方法 采用荧光定量qRT-PCR,对CpCyP1基因在隐孢子虫不同发育时期转录水平进行分析;通过原核表达系统获得带有His标签的CpCyP1重组蛋白(His-CpCyP1),并用该蛋白免疫新西兰家兔以制备特异性抗血清,利用亲和层析技术纯化所得抗血清;通过Western blot检测子孢子中的CpCyP1蛋白表达,通过间接免疫荧光(IFA)技术确定CpCyP1在虫体内不同发育阶段的亚细胞定位;最后,通过吸光度比色法测定His-CpCyP1的肽基脯氨酰顺反异构酶(peptidyl-prolyl cis-trans isomerase, PPIase)活性,并评估环孢菌素A(cyclosporine A, CsA)对His-CpCyP1酶活性的影响。结果 CpCyP1基因在隐孢子虫的各个发育阶段均有转录,尤其在裂殖体和配子阶段表达量较高;CpCyP1蛋白在子孢子和细胞内阶段均定位于虫体胞浆内。酶动力学研究显示,CpCyP1对含脯氨酸的短肽底物的米氏常数Km 为456.4 μmol/L,最大反应速率Vmax为1.981 U[μmol/(min·μg)]。CsA与CpCyP1结合的解离常数Kd 为5.122 μmol/L,半数抑制浓度IC50 为1.004 μmol/L。结论 CpCyP1在隐孢子虫的各个发育阶段均有表达,并且重组的CpCyP1具有微摩尔级别的PPIase酶活性,该活性可以被CsA所抑制,这提示CpCyP1可能是CsA的潜在底物,因此,CpCyP1作为抗虫药物靶点的潜力值得进一步研究。